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SUMO 관련 실험은 일반적으로 어떻게 설계됩니까? Western Blot을 사용하는 경우 어떤 종류의 항체를 선택해야 합니까? 실험 시스템을 자체적으로 구축할 수 있습니까?

SUMO(Small Ubiquitin-like Modifier) 수식에 대한 연구는 연구의 구체적인 목적(예: 전체 SUMO화, 특정 위치 수식, 특정 기질 단백질)에 따라 실험 설계를 정확히 구분해야 합니다. 다음은 단계별 설명입니다.

 

1. 일반적인 SUMO 관련 실험 설계 전략

1. 총 SUMO화 수준 검사

  • 목적: 스트레스나 약물 처리 등의 조건에서 세포/조직 내 SUMO화 동적 변화를 관찰합니다.

  • 방법: Western blot을 사용하여 전체 SUMO화 단백질 프로필을 검사합니다. 일반적으로 SUMO1, SUMO2/3 항체로 Smear 신호를 검출합니다.

 

2. 특정 위치/특정 기질 단백질의 SUMO화 검사

  • 목적: 특정 단백질이 SUMO화되었는지 확인하거나 특정 수식 위치를 식별합니다.

  • 방법: Co-IP + WB 또는 Ni-NTA 풀다운 + WB를 사용하여 SUMO화 형태를 검사하고 돌연변이체(K→R)를 사용하여 수식 위치를 확인합니다.

 

3. SUMO E1/E2/E3 효소 시스템 개입 실험

  • 목적: SUMO화 조절 메커니즘을 연구합니다.

  • 방법: SAE1/2, UBC9, PIAS 계열의 SUMO 효소를 유전자 노크아웃/과발현하여 기질 수식 변화를 관찰합니다.

 

4. 세포 위치 및 기능 실험

  • 목적: SUMO화가 단백질 기능에 미치는 영향을 관찰합니다.

  • 방법: GFP 융합 단백질 + 돌연변이체(WT vs SUMO-deficient)를 사용하여 공초점 현미경, 전사 활성 검사 등의 방법을 활용합니다.

 

2. Western Blot 항체 선택

1. Anti-SUMO 항체(전체 SUMO화를 검사하기 위한 용도)

(1) Anti-SUMO1: 특정 SUMO1 수식(주로 핵 내 조절에 참여)을 검출하는데 사용됩니다.

(2) Anti-SUMO2/3(교차 반응): SUMO2와 SUMO3 수식을 인식하며, 주로 스트레스 반응 중 빠르게 상향 조절됩니다.

Smear 검출 능력을 갖춘 검증된 항체를 선택하는 것이 좋습니다. 추천 브랜드는 Cell Signaling, Abcam, Enzo 등입니다.

 

2. 목표 단백질 항체

특정 기질 단백질의 SUMO화를 연구할 경우, IP 또는 WB에서 해당 단백질의 특이적 항체를 사용해야 합니다.

 

3. 태그 항체(His, Flag, HA)

His-SUMO와 같은 태그 단백질을 사용하여 정제하거나 공동 발현할 때 자주 사용됩니다.

 

3. 실험 시스템 구축 권장사항

1. 안정적 또는 일시적 발현 시스템을 직접 구축할 수 있습니다.

  • His-SUMO1/SUMO2/3 융합 단백질을 발현하여 Ni-NTA 풀다운으로 SUMO화 단백질을 농축하는 데 유리합니다.

  • 목표 단백질 Flag-tag 발현을 결합하여 SUMO화를 검증합니다.

  • SUMO 효소가 완전하게 발현되는 세포에서 실험을 수행하는 것이 좋습니다. 예를 들어 HEK293T 세포가 있습니다.

 

2. 발현 구축 주의사항

  • SUMO 융합 단백질은 활성을 가진 구조를 가져야 하며, Gly-Gly 말단을 유지하는 것이 좋습니다.

  • 특이성을 검증하기 위해 K-R 돌연변이체를 음성 대조군으로 사용합니다.

  • 비생리적 과발현으로 인한 아티팩트를 방지하기 위해 발현량은 적당해야 합니다.

 

3. E3 효소는 공동 전이를 통해 특이적 SUMO화를 강화할 수 있습니다.

PIAS1, PIASy 공동 발현은 특정 표적 단백질의 SUMO화를 강화합니다.

 

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